ผลของสารสกัดใบตะลิงปลิงร่วมกับน้ำยาบ้วนปากคลอร์เฮกซิดีนร้อยละ 0.12 ต่อพอร์ไฟโรโมแนส จิงจิวาลิส
Effects of Averrhoa bilimbi Leaf Extract in Combination with 0.12% Chlorhexidine Mouthwash on Porphyromonas gingivalis
Keywords:
ฤทธิ์ต้านจุลชีพ, ตะลิงปลิง, น้ำยาบ้วนปากคลอร์เฮกซิดีน, พอร์ไฟโรโมแนส จิงจิวาลิส, Antimicrobial activity, Averrhoa bilimbi, Chlorhexidine mouthwash, Porphyromonas gingivalisAbstract
วัตถุประสงค์: ศึกษาหาค่าความเข้มข้นต่ำสุดต่อการยับยั้งและฆ่าพอร์ไฟโรโมแนส จิงจิวาลิสของสารสกัดใบตะลิงปลิง น้ำยาบ้วนปากคลอร์เฮกซิดีนและสารสกัดใบตะลิงปลิงร่วมกับน้ำยาบ้วนปากคลอร์เฮกซิดีน วัสดุอุปกรณ์และวิธีการ: ศึกษาหาค่าความเข้มข้นต่ำสุดที่ยับยั้งและฆ่าพอร์ไฟโรโมแนส จิงจิวาลิส ของสารสกัดใบตะลิงปลิง น้ำยาบ้วนปากคลอร์เฮกซิดีนร้อยละ 0.12 และสาร 2 อย่างร่วมกัน ด้วยวิธีเจือจางในอาหารเหลว และวิธีเลี้ยงเชื้อด้วยการลากหรือขีดบนจานเพาะเชื้อที่เป็นวุ้น ผลการศึกษา: สารสกัดใบตะลิงปลิงให้ฤทธิ์ในการยับยั้งและฆ่าพอร์ไฟโรโมแนส จิงจิวาลิสที่ความเข้มข้นตั้งแต่ 2.50 มิลลิกรัม/มิลลิลิตร และสารสกัดใบตะลิงปลิงทุกความเข้มข้นร่วมกับน้ำยาบ้วนปากคลอร์เฮกซิดีนที่ความเข้มข้น 4.69 ไมโครกรัม/มิลลิลิตร สามารถยับยั้งพอร์ไฟโรโมแนส จิงจิวาลิสได้ ส่วนสารสกัดใบตะลิงปลิงที่ความเข้มข้นตั้งแต่ 1.25 และตั้งแต่ 2.50 มิลลิกรัม/มิลลิลิตร ร่วมกับน้ำยาบ้วนปากคลอร์เฮกซิดีนที่ความเข้มข้นตั้งแต่ 0.59 และตั้งแต่ 0.29 ไมโครกรัม/มิลลิลิตร ตามลำดับ สามารถยับยั้งพอร์ไฟโรโมแนส จิงจิวาลิสได้ ในส่วนของการฆ่าพอร์ไฟโรโมแนส จิงจิวา พบสารสกัดใบตะลิงปลิงที่ความเข้มข้นตั้งแต่ 1.25 และตั้งแต่ 5.00 มิลลิกรัม/มิลลิลิตร ร่วมกับน้ำยาบ้วนปากคลอร์เฮกซิดีนที่ความเข้มข้น 4.69 และตั้งแต่ 0.29 ไมโครกรัม/มิลลิลิตร ตามลำดับ สามารถฆ่าพอร์ไฟโรโมแนส จิงจิวาลิสได้ จากผลการศึกษาที่ต้องการลดปริมาณการใช้น้ำยาบ้วนปากคลอร์เฮกซิดีน โดยนำสารสกัดใบตะลิงปลิงมาร่วมด้วย จะพบว่าน้ำยาบ้วนปากคลอร์เฮกซิดีนที่ความเข้มข้น 0.29 ไมโครกรัม/มิลลิลิตร ร่วมกับสารสกัดใบตะลิงปลิงที่ความเข้มข้นตั้งแต่ 2.50 มิลลิกรัม/มิลลิลิตร สามารถยับยั้งพอร์ไฟโรโมแนส จิงจิวาลิส และเมื่อใช้ร่วมกับสารสกัดใบตะลิงปลิงที่ความเข้มข้นตั้งแต่ 5.00 มิลลิกรัม/มิลลิลิตร สามารถฆ่าพอร์ไฟโรโมแนส จิงจิวาลิสได้ สรุป: สารสกัดใบตะลิงปลิงให้ฤทธิ์ในการยับยั้งและฆ่าพอร์ไฟโรโมแนส จิงจิวาลิส การนำสารสกัดใบตะลิงปลิงมาร่วมกับน้ำยาบ้วนปากคลอร์เฮกซิดีน ให้ฤทธิ์เสริมการยับยั้งและฆ่าพอร์ไฟโรโมแนส จิงจิวาลิส /Objectives: To determine the minimum inhibitory concentration (MIC) and minimum bactericidal concentration (MBC) against Porphyromonas gingivalis. Additionally, to Averrhoa bilimbi leaf extract, chlorhexidine mouthwash and Averrhoa bilimbi leaf extract in combination with chlorhexidine mouthwash. Materials and Methods: To determine the minimum inhibitory concentration and minimum bactericidal concentration of Averrhoa bilimbi leaves extract, 0.12% chlorhexidine mouthwash, and their combination against Porphyromonas gingivalis, using the broth dilution method and the streak agar plate method. Results: The extract of Averrhoa bilimbi leaves exhibited inhibitory and bactericidal effects against Porphyromonas gingivalis at concentrations starting from 2.50 mg/mL. In addition, all concentrations of the leaf extract, when combined with chlorhexidine mouthwash at 4.69 µg/ml, were able to inhibit Porphyromonas gingivalis. The leaf extract at concentrations starting from 1.25 and from 2.50 mg/ml, when combined with chlorhexidine mouthwash from 0.59 and from 0.29 µg/ml respectively, also inhibited Porphyromonas gingivalis. Regarding the bactericidal effect, the leaf extract at concentrations starting from 1.25 and from 5.00 mg/ml, in combination with chlorhexidine mouthwash at 4.69 and from 0.29 µg/ml respectively, was able to kill Porphyromonas gingivalis. Based on the study, which aimed to reduce the required concentration of chlorhexidine mouthwash by combining it with the leaf extract, it was found that chlorhexidine at 0.29 µg/ml, when combined with the leaf extract from 2.50 mg/ml, could inhibit Porphyromonas gingivalis. Moreover, when this concentration of chlorhexidine was combined with the leaf extract from 5.00 mg/ml, it was able to kill Porphyromonas gingivalis. Conclusion: The extract of Averrhoa bilimbi leaf extract exhibits inhibitory and bactericidal effects against Porphyromonas gingivalis. The combination of Averrhoa bilimbi leaf extract with chlorhexidine mouthwash demonstrates a synergistic effect in inhibiting and bactericidal against Porphyromonas gingivalis.Downloads
References
Hajishengallis G, Lamont RJ. Breaking bad: Manipulation of the host response by Porphyromonas gingivalis. Eur J Immunol. 2014;44(2):328-38.
Hajishengallis G, Darveau RP, Curtis MA. The keystone-pathogen hypothesis. Nat Rev Microbiol. 2012;10(10):717–5.
Wu D, Liu X, Li X, Hao L, Zhao G. Discovery of specific inhibitors of Porphyromonas gingivalis gingipains from food-derived flavonoids by high-throughput virtual screening and molecular simulations. Food Biosci. 2024;61:104596. doi: 10.1016/j.fbio.2024.104596.
Wu D, Li X, Zhao G, Hao L, Liu X. Discovery of gingipains and Porphyromonas gingivalis inhibitors from food-derived natural products: A narrative review. Foods. 2025;14(16):2869. doi: 10.3390/foods14162869.
Plonczynska A, Prucsi Z, Sochalska M, Potempa J. Porphyromonas gingivalis virulence factors and their role in undermining antimicrobial defenses and host cell death programs in the pathobiology of chronic periodontal disease. Advance Microb. 2025;64(1):3-23.
Lamont RJ, Hajishengallis G. Polymicrobial synergy and dysbiosis in inflammatory disease. Trends Mol Med. 2015;21(3):172–83.
. How KY , Song KP , Chan KG. Porphyromonas gingivalis: An overview of periodontopathic pathogen below the gum line. Front Microbiol. 2016;7:53. doi: 10.3389/fmicb.2016.00053.
Curtis MA, Zenobia C, Darveau RP. The relationship of the oral microbiota to periodontal health and disease. Cell Host Microbe. 2011;10(4):302–6.
Hajishengallis G. Porphyromonas gingivalis–host interactions: open war or intelligent guerilla tactics? Microbes Infect. 2015;17(7):497–507.
Saini RS, Vaddamanu SK, Dermawan D, Bavabeedu SS, Khudaverdyan M, Mosaddad SA, Heboyan A. In silico docking of medicinal herbs against P. gingivalis for chronic periodontitis intervention. Int Dent J. 2025;75(2):1113–35.
Grenier D, Chen H, Ben Lagha A, Fournier-Larente J, Morin MP. Dual action of myricetin on Porphyromonas gingivalis and the inflammatory response of host cells: A promising therapeutic molecule for periodontal diseases. PLoS One. 2015;10(6):e0131758. doi: 10.1371/journal.pone.0131758.
Peeran SW, Murugan M, Fageeh H, Ibraheem W, Fageeh HI, Basheer SN. Antibacterial, antiadherence, antioxidant, and molecular docking analysis of Rosa damascena extract on periodontopathic bacteria: Porphyromonas gingivalis and Aggregatibacter actinomycetemcomitans—an in vitro study. J Pharm Bioallied Sci. 2024;16(Suppl 5):S4678–S4687.
Ando D, Lwin HY, Aoki-Nonaka Y, Matsugishi-Nasu A, Minato Y, Warita Y, et al. Ferulic acid suppresses Porphyromonas gingivalis biofilm formation via the inhibition of autoinducer-2 production and receptor activity. Arch Oral Biol. 2025;178:106365. doi: 10.1016/j.archoralbio.2025.106365.
Nasution M, Simatupang Y, Dennis D. Effectiveness of star fruit leaf extract on the growth of Streptococcus sanguinis: An in vitro study. World J Dent. 2020;11(3):196–200.
Nathania M, Wasito EB, Hasanathuludhiyah N. In vitro antibacterial activity of Averrhoa bilimbi leaves ethanol extract against Salmonella typhi. J Ilm Mhs Kedokt Univ Airlangga. 2023;14(1):43-7.
Safitri I, Leliqia NPE. A review of phytochemical properties, antibacterial activity, and toxicity study of Averrhoa bilimbi leaves and fruit. J Pharm Sci Appl. 2021;3(1):32-9.
Liantari DS. Effect of star fruit leaf extract for Streptococcus mutans growth. J Majority 2014;3(7):27–33.
Setyawan HY, Sukardi S, Nareswari BF. The phytochemical potential of Averrhoa bilimbi – A review. IOP Conf Ser: Earth Environ Sci. 2021;733:012091.
Mokhtar SI, Aziz NAA. Antimicrobial properties of Averrhoa bilimbi extracts at different maturity stages. J Med Microb Diagn. 2016; 5(3):233. doi:10.4172/2161-0703.1000233.
Saquib SA, AlQahtani NA, Ahmad I, Arora S, Asif SM, Javali MA, et al. Synergistic antibacterial activity of herbal extracts with antibiotics on bacteria responsible for periodontitis. J Infect Dev Ctries. 2021;15(11):1685–93.
Betoni JE, Mantovani RP, Barbosa LN, Di Stasi LC, Fernandes Junior A. Synergism between plant extract and antimicrobial drugs used on Staphylococcus aureus diseases. Mem Inst Oswaldo Cruz. 2006;101(4):387-90.
Kim YR, Nam SH. A randomized, placebo-controlled clinical trial evaluating of a mouthwash containing Sambucus williamsii var. coreana extract for prevention of gingivitits. Sci Rep. 2022;12(1):11250. doi: 10.1038/s41598-022-15445-7.
Oak A, Bachubhai Sapariya D, Nayak C, Kumar Reddy AS, Lakshmi RS, Dalal D. A randomized double-blind clinical trial evaluates the efficacy of alternative herbal mouthwashes Cureus. 2023;15(6):e40394. doi: 10.7759/cureus. 40394.
Kim YR, Nam SH. Effectiveness of Glycyrrhiza uralensis extract on periodontal pathogens: a randomized controlled clinical trial. BMC Oral Health. 2025;25(1):783. doi: 10.1186/s12903-02506172-2.
Pradeep AR, Suke DK, Martande SS, Singh SP, Nagpal K, Naik SB. Triphala, a new herbal mouthwash for the treatment of gingivitis: A randomized controlled clinical trial. J Periodontol. 2016;87(11):1352-9.
Lukomska-Szymanska M, Sokolowski J, Lapinska B. Chlorhexidine-mechanism of action and its application to dentistry. J Stomatol 2017;70(4):405–17.
Järvinen H, Tenovuo J, Huovinen P. In vitro susceptibility of Streptococcus mutans to chlorhexidine and six other antimicrobial agents. Antimicrob Agents Chemother. 1993;37(5):1158-9.
Briner WW, Kayrouz GA, Chanak MX. Comparative antimicrobial effectiveness of a substantive (0.12% chlorhexidine) and a nonsubstantive (phenolic) mouthrinse in vivo and in vitro. Compendium. 1994;15(9):1158-62.
Järvinen H, Pienihäkkinen K, Huovinen P, Tenovuo J. Susceptibility of Streptococcus mutans and Streptococcus sobrinus to antimicrobial agents after short-term oral chlorhexidine treatments. Eur J Oral Sci. 1995;103(1):32-5.
Eldridge KR, Finnie SF, Stephens JA, Mauad AM, Munoz CA, Kettering JD. Efficacy of an alcohol-free chlorhexidine mouthrinse as an antimicrobial agent. J Prosthet Dent. 1998;80(6):685-90.
Buckner RY, Kayrouz GA, Briner W. Reduction of oral microbes by a single chlorhexidine rinse. Compendium. 1994;15(4):512-6.
Stanley A, Wilson M, Newman HN. The in vitro effects of chlorhexidine on subgingival plaque bacteria. J Clin Periodontol. 1989;16(4):259-64.
Kaewmanee PC, Aiumtrakul N, Sritaweesap P, Soonthornpusit A, Jaturont J, Theerauthhavate B. The effect of each crude extract from Streblus asper, Andrographis paniculata and Curcuma longa in combination with chlorhexidine for antimicrobial activity against Streptococcus mutans. SWU Dent J. 2023;16(2):114-27.
Talebi Ardakani M, Farahi A, Mojab F, Moscowchi A, Gharazi Z. Effect of an herbal mouthwash on periodontal indices in patients with plaque-induced gingivitis: A cross-over clinical trial. J Adv Periodontol Implant Dent. 2022;14(2):109-13.
Najafi MH, Taheri M, Mokhtari MR, Forouzanfar A, Farazi F, Mirzaee M, et al. Comparative study of 0.2% and 0.12% digluconate chlorhexidine mouth rinses on the level of dental staining and gingival indices. Dent Res J (Isfahan). 2012;9(3):305-8.
Löe H, Schiott R. The effect of mouthrinses and topical application of chlorhexidine on the development of dental plaque and gingivitis in man. J Periodontal Res. 1970;5(2):79–83.
Miranda AF, Lia EN, de Carvalho TM, Piau CG, Costa PP, Bezerra AC. Oral health promotion in patients with chronic renal failure admitted in the intensive care unit. Clin Case Rep. 2015;4(1):26-31.
Bescos R, Ashworth A, Cutler C, Brookes L, Belfield L, Rodiles A, et al. Effects of chlorhexidine mouthwash on the oral microbiome. Sci Rep. 2020;10(1 ):5254. doi: 10.1038/s41598-020-61912-4.
James P, Worthington H, Parnell C, Harding M, Lamont T, Cheung A, et al. Chlorhexidine mouthrinse as an adjunctive treatment for gingival health. Cochrane Database Syst Rev. 2017;3(3):1-2.
Iwansyah AC, Desnilasari D, Agustina W, Devry Pramesti D, Indriati A, Mayasti NKI, et al. Evaluation on the physicochemical properties and mineral contents of Averrhoa bilimbi L. leaves dried extract and its antioxidant and antibacterial capacities. Food Sci Technol. 2021;41(4):987-92.
Niawanti H, Lewar YS, Octavia NN. Effect of extraction time on Averrhoa bilimbi leaf ethanolic extracts using Soxhlet apparatus. 1st International Symposium of Indonesian Chemical Engineering (ISIChem) 2019, IOP Conf. Series: Materials Science and Engineering 543 (2019) 012018. IOP Publishing. doi:10.1088/1757-899X/543/1/012018.
Mosaddad SA, Hussain A, Tebyaniyan H. Green alternatives as antimicrobial agents in mitigating periodontal diseases: A narrative review. Microorganisms. 2023;11(5):1269. doi: 10.3390/microorganisms11051269.
Poppolo Deus F, Ouanounou A. Chlorhexidine in dentistry: Pharmacology, uses, and adverse effects. Int Dent J. 2022;72(3):269–77.
Sena NT, Gomes BP, Vianna ME, Berber VB, Zaia AA, Ferraz CC, et al. In vitro antimicrobial activity of sodium hypochlorite and chlorhexidine against selected single-species biofilms. Int Endod J. 2006;39(11):878-85.
Swarnalatha C, Suresh Babu J, Almansour N, Almalaq S, Alnasrallah F, Alshammari T, et al. Comparison of commercially available 0.12% and 0.2% chlorhexidine mouthrinses on plaque and gingiva: A randomized controlled trial. Dent Hyp. 2021;12(2):59-66.
Ahliha AH, Nurosyid F, Supriyanto A, Kusumaningsih T. Optical properties of anthocyanin dyes on TiO2 as photosensitizers for application of dye-sensitized solar cell (DSSC). IOP Conf. Ser: Mater Sci Eng. 2018;333:012018. doi 10.1088/1757-899X/333/1/012018.
Raji P, Samrot AV, Rohan DB, Kumar MD, Geetika R, Sharma VK, et al. Extraction, characterization and in vitro bioactivity evaluation of alkaloids, flavonoids, saponins and tannins of Cassia alata, Thespesia populnea, Euphorbia hirta and Wrightia tinctoria. J. Chem. 2019;12(1):123-37.
Das SC, Sultana S, Roy S, Hasan SS. Antibacterial and cytotoxic activities of methanolic extracts of leaf and fruit parts of the plant Averrhoa bilimbi (Oxalidaceae). Am J Sci Ind Res. 2011;2(4):531-36.
Minasari, Amelia S, Simatupang Y. Effectiveness of some concentration star fruit leaf extracts to growth of Streptococcus sanguis. J Agric Life Sci. 2021;8(2):9-14.
Niawanti H, Putri NP, Rabimardani N, Amalia S, Lusiani CE. Modeling of tannin mass transfer on the Averrhoa bilimbi leaf extraction using Box-Behnken Design. Eurasia J Biosci. 2019;13(2):2327-35.
Wahyukundari MA, Izdihar S, Praharani D. Extract wuluh starfruit (Averrhoa bilimbi L.) potentiate the effect of antibacterial against Porphyromonas gingivalis. Int J Appl Dent Sci. 2023;9(2):301-5.
Downloads
Published
How to Cite
Issue
Section
Categories
License
Copyright (c) 2026 Srinakharinwirot University Dental Journal (E-ISSN 2774-0811)

This work is licensed under a Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.
เจ้าของบทความต้องมอบลิขสิทธิ์ในการตีพิมพ์แก่วิทยาสาร โดยเขียนเป็นลายลักษณ์อักษรแนบมาพร้อมบทความที่ส่งมาตีพิมพ์ ตามแบบฟอร์ม "The cover letter format" รวมทั้งต้องมีลายมือชื่อของผู้เขียนทุกท่านรับรองว่าบทความดังกล่าวส่งมาตีพิมพ์ที่วิทยาสารนี้แห่งเดียวเท่านั้น